70. Koje su mjere opreza za određivanje zaostalog klora?
Klor je vrlo nestabilan u vodenoj otopini, posebno u niskim koncentracijama, a sadržaj će se brzo smanjivati. Brzina smanjenja klora ubrzat će se kad je izložena sunčevoj svjetlosti i drugoj snažnoj svjetlosti ili uznemirenom. Stoga se uzorak ne može pohraniti nakon uzorkovanja, a određivanje klora mora se odmah pokrenuti, a istovremeno izbjegavajući izlaganje svjetlosti i uznemirenost uzorka vode.
Sve operacije tijekom postupka određivanja moraju izbjegavati izravno izlaganje sunčevoj svjetlosti, a najbolje je izvesti na najnižoj mogućoj temperaturi i mekom svjetlu. Pored toga, sve kolorimetrijske metode zahtijevaju praznine u boji i zamućenosti kako bi nadoknadili boju i kromatičnost sirove vode, posebno kada su zamućenost i kromatičnost visoka, prazna vrijednost mora se utvrditi.
Kada se koristi vizualna kolorimetrijska metoda O-tolin za određivanje zaostalog klora, ako se uzorak vode ravnomjerno miješa sa standardnom otopinom O-tolin, a zatim se kolorimetrijska metoda izvršava odmah, izmjereni rezultat je slobodni rezidualni klor. Ako se uzorak vode postavi na tamno mjesto 10 minuta kako bi se proizvela najveća kromatičnost prije nego što se provede kolorimetrijska metoda, rezultat je ukupni zaostali klor. Ukupni zaostali klor minus slobodni zaostali klor je kombinirani zaostali klor.
Kada se koristi vizualna kolorimetrijska metoda O-tolinskog olinga kako bi se utvrdilo je li rezidualni klor velik, proizvede će se narančasto-žuta boja; Ako je alkalnost uzorka vode previsoka, a zaostali klor mali, proizvedet će se svijetlo zelena ili svijetloplava boja. U ovom se trenutku može dodati 1 ml standardne otopine O-tolidina kako bi se stvorila normalna svijetlo žuta boja.
71. Koje su razlike između biološke faze metode biofilma i aktiviranog mulja?
Karakteristike biološke faze sustava liječenja biofilma razlikuju se od onih u procesu aktiviranog mulja, uglavnom u smislu mikrobnih vrsta i raspodjele.
Općenito govoreći, zbog postupne promjene kvalitete vode i poboljšanja okolišnih uvjeta za rast mikroba, vrste i količine mikroorganizama u sustavu biofilma su više od onih u procesu aktiviranog mulja, a prehrambeni lanac je dug i složeniji, posebno povećanje broja kaktorije, protozoa i metala, i tamo je metazona. Alge se mogu pojaviti na područjima koja su izložena sunčevoj svjetlosti, a mogu se pojaviti i insekti poput filtra. Karakteristike raspodjele su da duž debljine biofilma (iz površine do unutarnje) ili smjera utjecaja (različito vrijeme kontakta s utjecajem), vrste i količine mikroorganizama pokazuju velike razlike. U prvoj fazi liječenja u više faza ili gornjeg dijela sloja punila protoka prema dolje, biofilmom često dominiraju flokulentne bakterije, a debljina filma je također relativno velika (2-3 mm); S povećanjem broja faza ili donjeg dijela sloja punila za punjenje protoka prema dolje, jer je kvaliteta vode koju kontaktira djelomično tretirana, više vlaknastih bakterija, protozoa i metazoa postupno će se pojaviti u biofilmu; Vrste mikroorganizama se povećavaju, ali debljina biofilma se neprestano smanjuje (1-2 mm). Mikroorganizmi na površini biofilma svi su aerobni, a kako se debljina povećava, mikroorganizmi postupno postaju fakultativni ili čak anaerobni.
Biofilm je fiksiran na filtriranom materijalu ili punilu, a biološko vrijeme zadržavanja čvrstog čvrstog SRT -a (dob mulja) je dugačak, tako da može rasti mikroorganizme s dugim vremenom generacije i vrlo niskom brzinom proliferacije, poput nitrifikacijskih bakterija. Veliki broj vlaknastih bakterija također se može pojaviti na biofilmu, ali neće se dogoditi gorivanje mulja. U usporedbi s metodom aktiviranog mulja, udio prehrane životinja u organizmima na biofilmu je veći, stopa preživljavanja mikro-životinja je također veća i može naseljavati organizme visoke razine na nivou. Oligochaeti i insekti naseljavaju iznad grabežljivih cilijata, rotifera i nematoda. Stoga je prehrambeni lanac na biofilmu duži od prehrambenog lanca u aktiviranom mulju, zbog čega je količina mulja proizvedenog metodom biofilma manja od one u metodi aktiviranog mulja.
Karakteristični mikroorganizmi na svakoj razini ili svaki sloj punila bit će različiti zbog različite kvalitete otpadnih voda, to jest, promjene u kvaliteti vode uzrokovat će promjene u vrstama i brojevima mikroorganizama u biofilmu. Kad se koncentracija utjecaja poveća, može se primijetiti da se karakteristični mikroorganizmi izvorne razine kreću prema dolje, odnosno mikroorganizmi izvorno na prednjoj razini ili gornjem sloju punila mogu se pojaviti na stražnjoj ili donjem sloju punila. Stoga se slične promjene mogu primijetiti promatranjem biološke faze kako bi se zaključile promjene u koncentraciji otpadnih voda ili opterećenja mulja.
72. Što znači ukupni indikator broja bakterija u vodi?
Ukupni broj bakterija odnosi se na broj kolonija uzgajanih u 1 ml uzorka vode u srednjem agar hranjivim tvarima nakon kultiviranja na 37oc tijekom 24 sata. Jedinica mjerenja općenito je ukupni broj bakterija sadržanih u svakom ML vode. Ukupni broj bakterija u vodi često je povezan sa stupnjem organskog zagađenja u vodenom tijelu i jedan je od važnih pokazatelja za procjenu stupnja onečišćenja vode i moguće štete ljudskom tijelu.
Metoda analize ukupnog broja bakterija koristi standardnu metodu ploče za brojanje bakterija u uzorku vode, što je metoda za određivanje gustoće aerobnih i fakultativnih anaerobnih heterotrofnih bakterija u vodi. Međutim, budući da nijedna baza hranjivih tvari ili bilo koje okolišno stanje ne mogu zadovoljiti fiziološke potrebe svih bakterija u uzorku vode, a bakterije u vodi mogu postojati u obliku pojedinih pojedinaca, parova, lanca, klastera ili klastera, odmjereni broj kolonija zapravo je niži od broja bakterija koje zapravo prežive u uzorku ispitivane vode.
73. Koje su mjere opreza za određivanje ukupnog broja bakterija?
Upotrijebite metodu aseptičke operacije za apsorbiranje 1 ml uzorka vode ili 2 do 3 razrijeđene uzorke vode s odgovarajućim razrjeđivanjem višestrukih razrjeđivanja, ubrizgavanje u steriliziranu ploču, a zatim izlijte 15 ml hranjivog agarskog medija i temeljito je pomiješajte s uzorkom vode, napravite dva paralelna uzorka za svaki uzorak vode, a uz to bi se trebao izliti prazna srednja agar.
Nakon kulture, broj kolonija ploča treba izvršiti odmah. Ako se broj mora odgoditi, ploča se može pohraniti u okruženju od 5-10OC, ali ne više od 24 sata, a ta se praksa ne bi trebala koristiti kao rutinska metoda rada.
Kada brojite kolonije tanjura, možete promatrati golim okom. Da biste spriječili propuste, upotrijebite povećalo da biste provjerili ako je potrebno. Za one kolonije koje izgledaju slično i blizu su jedna drugoj, ali ne dodiruju, sve dok je udaljenost manja od promjera najmanje kolonije, treba ih brojati odvojeno. Te kolonije koje su u bliskom kontaktu, ali imaju različite pojave (morfologija ili boja) također bi se trebale brojati odvojeno.
Kada izračunava prosječni broj kolonije istog razrjeđivanja, ako jedna od ploča ima velike kolonije pahuljice, ne bi se trebalo koristiti, a ploča bez kolonija pahuljice treba koristiti kao broj kolonija razrjeđivanja. Ako su kolonije pahuljice manje od polovice ploče, a raspodjela preostalih kolonija vrlo je ujednačena, broj kolonije 1/2 ploče s ujednačenim rastom može se pomnožiti s 2 kako bi se predstavljao broj kolonije cijele ploče.
Rezultat ukupnog broja bakterija je ukupni broj kolonija u svakoj ploči ili prosječni broj kolonija paralelnih eksperimentalnih ploča istog razrjeđivanja pomnoženih s višestrukim razrjeđivanjem. Kad je konačni rezultat unutar 100, rezultat se bilježi prema stvarnom broju kolonija; Kad je veća od 100, koriste se dvije značajne brojke i izražavaju se kao eksponent od 10. Ako se broj kolonija ne može računati, prilikom izvještavanja o rezultatima treba primijetiti višestruke razrjeđivanje.
74. Kako izračunati ukupni broj bakterija u uzorku vode na temelju rezultata broja kolonije?
Prilikom izračunavanja rezultata ispitivanja ukupnog broja bakterija, potrebno je usporediti i izračunati na temelju prosječnog broja kolonija pri različitim razrjeđivanjima. Metoda je sljedeća:
⑴ Prvo odaberite slučaj u kojem je prosječni broj kolonija između 30 i 300 za izračun. Kada prosječni broj kolonija pri samo jednom razrjeđivanju ispuni ovaj raspon, prosječni broj kolonija pomnoženih s njegovim višestrukim razrjeđivanjem koristi se kao rezultat ukupnog broja bakterija u uzorku vode.
⑵ Ako je prosječni broj kolonija na dva razrjeđenja između 30 i 300, metodu izračuna treba odrediti prema omjeru dva. Ako je omjer manji od 2, prosjek prosječnog broja kolonije pomnožen s višestrukim razrjeđivanjem koristi se kao rezultat ukupnog broja bakterija u uzorku vode; Ako je omjer veći od 2, manji od prosječnog broja kolonije pomnoženog s njegovim višestrukim razrjeđivanjem koristi se kao rezultat ukupnog broja bakterija u uzorku vode.
Ako je prosječni broj kolonija svih razrjeđivanja veći od 300, prosječni broj kolonija najvećeg razrjeđivanja višestruko pomnožen s njegovim razrjeđivanjem višestruko se koristi kao rezultat ukupnog broja bakterija u uzorku vode.
Ako je prosječni broj kolonija svih razrjeđivanja manji od 30, prosječni broj kolonija najmanjih razrjeđivanja višestruko pomnožen s njegovim razrjeđivanjem višestruko se koristi kao rezultat ukupnog broja bakterija u uzorku vode.
Ako prosječni broj kolonija svih razrjeđenja nije između 30 i 300, prosječni broj kolonija najbliži 30 ili 300 pomnožen s njegovim višestrukim razrjeđivanjem koristi se kao rezultat ukupnog broja bakterija u uzorku vode.
75. Što je značenje koliformnog broja (vrijednosti)?
Koliformne bakterije odnose se na klasu aerobnih ili fakultativnih anaerobnih, fermentiranja laktoze, gram-negativnih šipki bez spore, tako da se ponekad nazivaju i fekalne koliforme ili Escherichia coli. Koliformne bakterije mogu proizvesti kiselinu i plin nakon uzgoja u laktoznom mediju na 37oc tijekom 24 sata. Broj (vrijednost) koliformnih bakterija obično se mjeri u broju koliformnih bakterija sadržanih u 1L ili 100 ml vode.
Ako je izvor vode zagađen izmetom, može biti zagađen crijevnim patogenima i uzrokovati crijevne zarazne bolesti. Budući da crijevni patogeni čine relativno mali udio broja mikroorganizama, često je vrlo teško odvojiti patogene od vode, posebno vode iz slavine. Koliformne bakterije su najčešća i najveća vrsta bakterija među crijevnim aerobnim bakterijama, tako da se često koriste kao indikatorske bakterije za onečišćenje fekalije. Odnosno, broj koliformnih bakterija u vodi koristi se za prosuđivanje je li izvor vode zagađen izmetom, a otkrivena je mogućnost zaključivanja da je izvor vode zagađen crijevnim patogenima.
76. Koje su metode za određivanje broja koliformnih bakterija?
Postoje dvije najčešće korištene metode za određivanje ukupne koliformne bakterije: metoda fermentacije s više cijevi i metoda membranskog filtra.
Metoda fermentacije s više cijevi temelji se na karakteristikama koliformnih bakterija kao što su fermentacija laktoze, gram-negativne boje, bez spora i u obliku štapa. Ispituje se kroz tri koraka kako bi se odredio ukupni broj koliformnih bakterija u uzorku vode. Metoda fermentacije s više cijevi koristi najvjerojatniji broj za izražavanje eksperimentalnih rezultata, poznatih i kao MPN. To je zapravo metoda za procjenu gustoće i sanitarne kvalitete E. coli u vodenim tijelima na temelju statističke teorije. Ova procjena obično je veća od stvarnog broja. Procijenjena vrijednost koliformnog broja određena je razrjeđivanjem koje pokazuje pozitivne i negativne rezultate. Prilikom dizajniranja broja ponavljanja potrebnih za ispitivanje uzorka vode, to bi se trebalo temeljiti na točnosti potrebnih podataka.
Metoda membranskog filtra koristi posebnu steriliziranu mikroporoznu membranu za filtriranje uzorka vode. Nakon što su bakterije zarobljene na membrani, membrana je pričvršćena na kulturu kulture natrijevog sulfita za kulturu. Budući da koliformne bakterije mogu fermentirati laktozu, ljubičasto-crvene kolonije s metalnim sjajem pojavit će se nakon uzgoja na filter membrani. Brojinjem broja kolonija s ovom karakteristikom na filter membrani može se izračunati broj koliformnih bakterija sadržanih u svakoj litri uzorka vode. Metoda membrane filtra može izmjeriti veći volumen uzoraka vode i može dobiti rezultate brže od metode fermentacije s više cijevi, ali učinak je loš kada je zamućenost visoka i gustoća ne-E. Bakterije coli su visoke.
77. Što je zaostali klor?
Ostatak klora je klor koji ostaje u vodi nakon što je voda dezinficirana klorom određeno vrijeme. Njegova je funkcija održavanje kontinuirane baktericidne sposobnosti. Od trenutka kada voda uđe u mrežu cijevi do vodene točke, mora se održavati učinak dezinfekcijskog sredstva u vodi kako bi se spriječilo moguće oštećenje i ponovno rast patogena. To zahtijeva da količina dezinfekcijskog profita dodana u vodu ne samo da bi trebala zadovoljiti potrebe ubijanja patogena u vodi, već i zadržati određenu količinu zaostale količine kako bi se spriječilo ponovno rast patogena tijekom procesa prijevoza vode. Ako se koristi dezinfekcija klora, tada je dio dezinfekcijskog sredstva koji prelazi potrebe za dezinfekcijom u to vrijeme zaostali klor.
Preostali klor ima dva oblika: slobodni zaostali klor (CL2, HOCL i OCL-) i kombinirani zaostali klor (NH2CL, NHCL2 i NCL3). Ova dva oblika mogu istovremeno postojati u istom uzorku vode, a zbroj dva naziva se ukupnim zaostalim klorom. Slobodni zaostali klor ima snažnu baktericidnu sposobnost, ali je lako razgraditi. Kombinirani zaostali klor ima slabu baktericidnu sposobnost, ali traje duže u vodi. Općenito, kada u vodi nema amonijaka ili amonijaka, zaostali klor je slobodni zaostali klor, dok kad u vodi postoji amonijak ili amonij, zaostali klor obično sadrži samo kombinirani rezidualni klor, a ponekad i rezidualni klor i kombinirani rezidualni klor. Količina zaostalog klora mora biti prikladna. Previsi neće igrati ulogu u sprečavanju i liječenju patogena. Previsok ne samo da će povećati troškove dezinfekcije, već može nanijeti i štetu ljudskom tijelu kada je u kontaktu s ljudskim tijelom.
Konceptualno, zaostali klor odnosi se na dezinfekciju serijama klora i klora. Kada koristite druga neklorljiva dezinfekcijska sredstva kao što je klor dioksid, zaostali klor treba shvatiti kao preostalo dezinfekcijsko sredstvo koje je ostavljeno u vodi nakon određenog kontaktnog razdoblja.
78. Koje su metode za određivanje zaostalog klora? Koji su njihovi primjenjivi opseg?
The determination of residual chlorine can be carried out by iodine titration, o-tolidine visual colorimetry, N,N-diethyl-p-phenylenediamine (DPD) ferrous titration (GB 11897-89), N,N-diethyl-p-phenylenediamine spectrophotometry (GB 11898-89), etc. The iodine titration method can only determine the total preostali klor u uzorku vode; O-tolidin metoda vizualne kolorimetrije može odrediti ukupni zaostali klor i slobodni rezidualni klor, promjenom radnog postupka; N, N-dietil-P-fenileniamin metoda titracije ili metoda spektrofotometrije može odrediti slobodni klor ili ukupni klor u rasponu koncentracije od 0,03-5 mg/l, a promjenom operativnog postupka, monokloramin, dikloramin i neki kombinirani komponenti klora mogu također odrediti u skladu.
Metoda titracije joda prikladna je za uzorke vode s ukupnim sadržajem zaostalog klora većeg od 1 mg/L, a uobičajena je metoda za određivanje količine dodanog klora. O-tolidin vizualna kolorimetrijska metoda jednostavna je za rad i uobičajena je metoda za određivanje zaostalog klora u pitkoj vodi. Raspon mjerenja je 0,01-10 mg/L. N, N-dietil-P-fenilendiamin metoda titracije ili metoda spektrofotometrije ima visoku osjetljivost i može odrediti uzorke vode s niskim sadržajem zaostalih klora. Pogodan je za određivanje ukupnog raspoloživog klora u kanalizaciji koja sadrži organsku tvar. Rasponi mjerenja dviju metoda su 0,05-1,5 mg/L i 0,03-5 mg/L, respektivno.